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當前位置:首頁產品中心蛋白研究蛋白純化M1051MBP標簽純化試劑盒

MBP標簽純化試劑盒
產品簡介

MBP標簽親和填料 (麥芽糖結合蛋白)是一種純化帶有麥芽糖結合蛋白(MBP)標簽蛋白的親和層析介質,具體性能見表1。MBP可促進連接蛋白的正確折疊,增加在細菌中過量表達的融合蛋白的溶解性,尤其是真核蛋白。Dextrin Beads 6FF可以一步純化MBP融合蛋白,結合的融合蛋白可以用10 mM麥芽糖進行溫和洗脫,保護了標簽蛋白的活性。如果要去除MBP融合部分可用位點特異性蛋白酶切除。

產品型號:M1051
更新時間:2024-08-12
廠商性質:代理商
訪問量:424
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品牌LABLEAD規格5ml
供貨周期現貨應用領域食品/農產品,化工,生物產業,農林牧漁,制藥/生物制藥

產品貨號:M1051

儲存條件:4℃保存

 

產品組分

貨號

組分

規格

M1051A

Dextrin Beads 6FF

5ml

M1051B

binding buffer(平衡液)

100ml*2

M1051C

washing buffer(洗雜液)

100ml*2

M1051D

elution buffer(洗脫液)

50ml

M1051E

3ml AC層析空柱

10套

M1051F

溶jun酶

60mg

 

產品簡介

MBP標簽蛋白純化試劑盒能夠純化帶有麥芽糖結合蛋白(MBP)標簽蛋白。MBP可促進連接蛋白的正確折疊,增加在細菌中過量表達的融合蛋白的溶解性,尤其是真核蛋白。Dextrin Beads 6FF 可以一步純化 MBP 融合蛋白,結合的融合蛋白可以用10 mM 麥芽糖進行溫和洗脫,保護了標簽蛋白的活性。如果要去除 MBP 融合部分可用位點特異性蛋白酶切除。

 

注意事項:

1、試劑盒中的Dextrin Beads 6FF體積5ml為beads體積,總體積10ml(保護液為20%乙醇溶液)使用前需要充分混合均勻;

2、請勿在-20oC或更低溫度冷凍保存Dextrin Beads 6FF

3、若離心不能wan全除去蛋白樣品中的不溶物,可以將樣品溶液用0.45µm的濾膜過濾。

4、若使用本說明書提供的條件無法達到理想的純化效果,可嘗試改變洗雜液和洗脫液中咪唑的濃度和(或)pH。

5、請穿實驗服戴一次性手套操作。

 

實驗步驟

1. 樣品準備 

樣品在上樣前建議離心或用0.22μm 或 0.45μm 濾膜過濾,減少雜質,提高蛋白純化效率和防止堵塞柱子。

 

2. Dextrin Beads 6FF  裝填

重力柱的裝填

1) 3ml AC層析空柱,純水浸泡墊片后,裝入下墊片(偏小的墊片),加入適量純水潤洗柱管和墊片,關閉下出口。

2) 將 Dextrin Beads 6FF 混合均勻,用槍頭吸取適量填料加入至重力柱中(介質實際體積占懸液的一半),打開下出口流干保護液。

3) 加入適量純水沖洗介質,待柱管中液體重力流干后,關閉下出口。

4) 裝入潤洗后的上墊片,確保墊片與填料之前沒有空隙,且保持水平。

5) 裝填好的重力柱可以直接加入平衡液進行平衡,暫不使用時則加入保護液,2-8℃保存。

 

3.樣品純化

Dextrin Beads重力柱使用:各溶液用量均按照柱體積計算(例如:2 個柱體積,1 ml 規格對應為 2 ml 溶液,5 ml 規格對應為 10 ml 溶液)。整個純化流程大約需要 30 min(主要取決于樣品體積和溶液的粘稠性),操作快捷。

1) 將 Dextrin Beads 6FF 重力柱固定在鐵架臺上,依次去掉下端塞和上端塞,流干重力柱的保護液。

2)  向柱管中加入 5 個柱體積的平衡液,進行平衡 ,使填料處于與目的蛋白相同的緩沖體系下,起到保護蛋白的作用。

3) 將樣品加到平衡好的重力柱中,樣品保留時間至少 2 min,保證目的蛋白與介質充分接觸 ,提高目的蛋白的回收率。收集流出液,用于 SDS-PAGE 分析蛋白質的結合情況,在出現問題時,更方便尋找解決問題的方案。

4) 用 10-15 倍柱體積的洗雜液進行清洗 ,去除非特異性吸附的雜蛋白,收集洗雜液。

5) 使用 5-10 倍柱體積的洗脫液進行目的蛋白的洗脫 ,分段收集,每一個柱體積收集一管,分別檢測,既可以保證所有結合的目的蛋白被洗脫,又可以得到高純度和高濃度的蛋白。

6) 依次使用 3 倍柱體積的平衡液和 5 倍柱體積的去離子水平衡填料。將重力柱保存在等體積的 20%乙醇中,置于 2-8℃保存,防止填料被細菌污染。

 

4. SDS-PAGE 檢測

將使用純化產品得到的樣品(包括流出組分、洗雜組分和洗脫組分)以及原始樣品使用 SDS-PAGE 檢測純化效果。

 

5. 在位清洗

Dextrin Beads 6FF 純化產品可以重復使用而無需再生,但隨著非特異性結合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和結合載量都下降,需要進行在位清洗操作(Cleaning-in-Place,CIP)。

3 倍柱體積的去離子水;

3 倍柱體積的 0.1% SDS 或 0.1 M NaOH 溶液;

3 倍柱體積去離子水,20%乙醇 2-8℃保存。



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